氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文

氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文

ID:11236946

大?。?3.50 KB

頁數(shù):4頁

時間:2018-07-10

氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文_第1頁
氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文_第2頁
氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文_第3頁
氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文_第4頁
資源描述:

《氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文》由會員上傳分享,免費在線閱讀,更多相關(guān)內(nèi)容在學(xué)術(shù)論文-天天文庫。

1、氟西汀對海馬神經(jīng)元生長的影響論文.freela公司),37℃消化30min,中間振搖1或2次,加入10%的DMEM/F12(美國Gibco公司)5ml,輕輕吹打15次,然后1000r·min-1離心5min,制成單細胞懸液,置于CO2培養(yǎng)箱(德國Heraeus公司產(chǎn)品)中,差速貼壁30min,去除成纖維細胞,吸取未貼壁的細胞,并用200目的不銹鋼濾網(wǎng)過濾,收集過濾后的單細胞懸液于培養(yǎng)皿中,然后至離心管中,取一滴單細胞懸液進行計數(shù),并用DMEM/F12將細胞密度調(diào)到1×106ml-1,然后接種于200μg·

2、ml-1多聚賴氨酸(美國Sigma公司)包被的6孔培養(yǎng)板中,轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),4h后換為無血清培養(yǎng)基,即含2%B27的Neurobasl培養(yǎng)基(美國Gibco公司),以后每3天半量換液1次。使用培養(yǎng)6d的神經(jīng)元進行染色鑒定。1.2大鼠海馬神經(jīng)元的鑒定1.2.1烯醇化酶(NSE)免疫細胞化學(xué)染色取培養(yǎng)6d6孔培養(yǎng)板中的蓋玻片進行神經(jīng)元特異的NSE免疫組織化學(xué)染色。棄去培養(yǎng)液,4%多聚甲醛室溫固定1h,加入0.3%H2O2甲醇去除內(nèi)源性過氧化氫酶,0.1%TritonX-100破膜,10%綿羊血清封閉,加入

3、一抗1∶200兔抗鼠NSE抗體,4℃濕盒過夜,0.01mmol·L-1PBS清洗,加入二抗1∶200生物素化的山羊抗兔IgG,放入37℃溫箱孵育60min;0.01mmol·L-1PBS清洗,滴加SABC過氧化物酶復(fù)合物,37℃溫箱中孵育60min,0.01mmol·L-1PBS清洗,滴加DAB顯色液作用3~10min,自來水沖洗后,常規(guī)脫水,透明封片。光鏡下觀察NSE表達陽性細胞。1.2.2尼氏染色6孔培養(yǎng)板的細胞培養(yǎng)7d時,取出蓋玻片進行尼氏染色。棄去培養(yǎng)液,0.01mmol·L-1PBS清洗,4%多

4、聚甲醛室溫固定1h,0.01mmol·L-1PBS清洗3次,氯仿中1min,95%、70%乙醇各1min,蒸餾水清洗,置于1%甲苯胺藍染液中染色20min,95%乙醇分化,在顯微鏡下觀察控制,時間以尼氏體顯示清晰為準,37℃干燥,二甲苯透明,中性樹脂封片,光學(xué)顯微鏡下觀察。1.3實驗分組在培養(yǎng)的第3天加入氟西?。ǔV莸谒闹扑帍S生產(chǎn)),根據(jù)藥物濃度不同,將實驗細胞分為5組,分別加入1、10、20、40μmol·L-1氟西汀;正常對照組加入等體積的培養(yǎng)基。1.4海馬細胞形態(tài)定量分析倒置相差顯微鏡(德國Zeis

5、s公司產(chǎn)品)下觀察加藥48h后的海馬神經(jīng)元形態(tài),每組各孔隨機選擇20個視野(每個視野0.17mm2),記錄每個視野內(nèi)細胞長出突起的神經(jīng)元數(shù)目,目鏡測微尺隨機測量15個神經(jīng)元突起的長度和胞體的長徑。1.5統(tǒng)計學(xué)處理應(yīng)用SPSS12.0軟件進行統(tǒng)計分析,各項檢測結(jié)果以x-±s表示。多組比較及組間兩兩比較采用方差分析。2結(jié)果2.1海馬神經(jīng)元形態(tài)學(xué)觀察倒置相差顯微鏡下觀察,培養(yǎng)1d,細胞絕大部分貼壁,細胞形態(tài)大小不一,以單突起的小細胞為主。培養(yǎng)6d,神經(jīng)元胞體較大,突起進一步增多、延長,并形成稀疏的網(wǎng)絡(luò)(圖1)。

6、培養(yǎng)12d,神經(jīng)元胞體進一步增大,突起形成比較稠密的網(wǎng)絡(luò)。培養(yǎng)24d,神經(jīng)元胞體出現(xiàn)空泡,部分神經(jīng)元死亡,胞體崩解,突觸斷裂。2.2海馬神經(jīng)元鑒定NSE免疫細胞化學(xué)染色:染色后光鏡下觀察第6天的神經(jīng)細胞,胞漿和突起被染成棕黃色為NSE抗體表達陽性細胞,以3個視野中陽性神經(jīng)元的數(shù)目占總細胞的比例為神經(jīng)元純度,經(jīng)鑒定神經(jīng)元的純度為90%。見圖2A。2.3氟西汀對海馬神經(jīng)元形態(tài)學(xué)的影響結(jié)果見表1和圖3。不同濃度的氟西汀對海馬神經(jīng)元形態(tài)學(xué)指標的影響是不同的,10μmol·L-1氟西汀組海馬神經(jīng)元與正常對照組相比,

7、有突起的神經(jīng)元數(shù)目增加、最長突起長度增長(P0.05);40μmol·L-1氟西汀組海馬神經(jīng)元與正常對照組相比,有突起神經(jīng)元數(shù)目減少(P0.05),最長突起長度及胞體長徑無顯著性差異(P0.05);1、20μmol·L-1氟西汀組海馬神經(jīng)元與正常對照組相比,有突起神經(jīng)元數(shù)目、最長突起長度及胞體長徑無顯著性差異(P0.05)。表1氟西汀對加藥48h海馬神經(jīng)元形態(tài)學(xué)的影響(略)3討論本實驗嚴格控制胰酶的量和消化時間,采用了0.25%胰蛋白酶低濃度溶液、30min長時間消化的方法,盡可能減少分離過程中的化學(xué)損傷

8、。為了避免操作過程中的機械損傷,分離時動作輕柔,規(guī)律換藥,每72h半量換液1次,換液時速度快,以減少對神經(jīng)元生長的影響。本實驗采用了差速貼壁生長,去除了成纖維細胞,并采用B27無血清培養(yǎng)基,可以選擇性地促使神經(jīng)元生長,抑制非神經(jīng)元的生長和繁殖[3],從而可以純化海馬神經(jīng)元。NSE是神經(jīng)元分化成熟的特異性標志酶之一,它主要表達于神經(jīng)元的胞體、軸突、樹突部分[4],通過NSE免疫細胞化學(xué)染色方法,可以鑒定體外培養(yǎng)的新生大鼠海馬神經(jīng)

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁,下載文檔查看全文

此文檔下載收益歸作者所有

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁,下載文檔查看全文
溫馨提示:
1. 部分包含數(shù)學(xué)公式或PPT動畫的文件,查看預(yù)覽時可能會顯示錯亂或異常,文件下載后無此問題,請放心下載。
2. 本文檔由用戶上傳,版權(quán)歸屬用戶,天天文庫負責(zé)整理代發(fā)布。如果您對本文檔版權(quán)有爭議請及時聯(lián)系客服。
3. 下載前請仔細閱讀文檔內(nèi)容,確認文檔內(nèi)容符合您的需求后進行下載,若出現(xiàn)內(nèi)容與標題不符可向本站投訴處理。
4. 下載文檔時可能由于網(wǎng)絡(luò)波動等原因無法下載或下載錯誤,付費完成后未能成功下載的用戶請聯(lián)系客服處理。