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《多花木藍(lán)鹽脅迫的生理響應(yīng)試驗(yàn)方案》由會員上傳分享,免費(fèi)在線閱讀,更多相關(guān)內(nèi)容在行業(yè)資料-天天文庫。
1、多花木藍(lán)鹽脅迫的生理響應(yīng)試驗(yàn)方案材料和樣品:多花木蘭種子、NaCl、完全培養(yǎng)液(硝酸鈣1克、磷酸二氫鉀0.25克、硫酸鎂0.25克、氯化鐵0.25克、氯化鉀或硝酸鉀0.25克)、蒸餾水。溶液培養(yǎng)皿設(shè)置:設(shè)置5組不同培養(yǎng)條件,選擇飽滿、均勻、外觀良好的種子,放入溶液培養(yǎng)皿中,每皿30粒,分別加入相同量的完全培養(yǎng)液及6ml不同濃度的NaCl溶液(濃度梯度:0g/L、2g/L、4g/L、8g/L、12g/L),編號1、2、3、4、5,第1組為對照組,實(shí)驗(yàn)中每組設(shè)3個重復(fù)試驗(yàn)。將培養(yǎng)皿置于溫室中培養(yǎng),每天下午3時適當(dāng)補(bǔ)充蒸發(fā)水分,以維持鹽分濃度的穩(wěn)定。培養(yǎng)相同時長,
2、待多花木藍(lán)長出幼苗后,分別測定5組多花木藍(lán)幼苗的各項(xiàng)指標(biāo)。一、多花木藍(lán)幼苗生長特性指標(biāo)測定生長指標(biāo)測定:記錄每組植株成活數(shù)量,計(jì)算成活率;用直尺和游標(biāo)卡尺測量株高、莖粗、最大側(cè)根長。根系活力的測定:TTC法材料、設(shè)備儀器及試劑(一)材料:水培的多花木藍(lán)根系。(二)儀器設(shè)備:分光光度計(jì);分析天平(感量0.1mg);電子頂載天平(感量0.1g);溫箱;研缽;三角瓶50ml;漏斗;量筒100ml;吸量管10ml;刻度試管10ml;試管架;容量瓶10ml;藥勺;石英砂適量;燒杯10ml、1000ml。(三)試劑:1)乙酸乙酯(分析純);2)次硫酸鈉(Na2S2O4)
3、,分析純,粉末;3)1%TTC溶液:準(zhǔn)確稱取TTC1.0g,溶于少量水中,定容到100ml,用時稀釋至各需要的濃度;4)磷酸緩沖液(1/15mol·L-1,pH7)。5)1mol·L-1硫酸:用量筒取比重1.84的濃硫酸55ml,邊攪拌邊加入盛有500ml蒸餾水的燒杯中,冷卻后稀釋至1000ml;6)0.4mol·L-1琥珀酸:稱取琥珀酸4.72g,溶于水中,定容至100ml即成。三、實(shí)驗(yàn)步驟(1)TTC標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:取0.4%TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中,加少許Na2S2O4粉搖勻后立即產(chǎn)生紅色的甲腙。再用乙酸乙酯定容至刻度,搖勻。然后分別取此
4、液0.25ml、0.50ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml置10ml容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到含甲腙25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的標(biāo)準(zhǔn)比色系列,以空白作參比,在485nm波長下測定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。(2)稱取5組根尖樣品各0.5g,每組取三次,分別編號11、12、13,21、22、23,31、32、33,41、42、43,51、52、53,放入10ml燒杯中,加入0.4%TTC溶液和磷酸緩沖液的等量混合液10ml,把根充分浸沒在溶液內(nèi),在37℃下暗保溫1~3h,此后加入1mol·L-1硫酸2ml,以停止反
5、應(yīng)。(與此同時做5個空白實(shí)驗(yàn),先加硫酸,再加根樣品,其他操作同上)。(3)把根取出,吸干水分后與乙酸乙酯3~4ml和少量石英砂一起在研缽內(nèi)磨碎,以提出甲腙。紅色提取液移入試管,并用少量乙酸乙酯把殘?jiān)礈於?、三次,皆移入試管,最后加乙酸乙酯使總量?0ml,用分光光度計(jì)在波長485nm下比色,以空白試驗(yàn)作參比測出吸光度,查標(biāo)準(zhǔn)曲線,即可求出四氮唑還原量。四、結(jié)果計(jì)算四氮唑還原強(qiáng)度(mg.g-1根鮮重h-1)=四氮唑還原量(mg)/根重(g)×?xí)r間(h)葉綠素含量測定:分光光度法材料、儀器設(shè)備及試劑(一)材料:新鮮的多花木藍(lán)葉片。(二)儀器設(shè)備:1.分光光度計(jì);
6、2.電子頂載天平(感量0.01g);3.研缽;4.棕色容量瓶;5.小漏斗;6.定量濾紙;7.吸水紙;8.擦境紙;9.滴管。(三)試劑:96%乙醇(或80%丙酮);石英砂;碳酸鈣粉。三、實(shí)驗(yàn)步驟1.取新鮮多花木藍(lán)葉片,擦凈組織表面污物,剪碎(去掉中脈),混勻。2.稱取5組剪碎的新鮮樣品各0.2g,分別放入研缽中,加少量石英砂和碳酸鈣粉及2~3ml95%乙醇,研成均漿,再加乙醇10ml,繼續(xù)研磨至組織變白。靜置3~5min。3.取濾紙1張,置漏斗中,用乙醇濕潤,沿玻棒把提取液倒入漏斗中,過濾到25ml棕色容量瓶中,用少量乙醇沖洗研缽、研棒及殘?jiān)鼣?shù)次,最后連同殘?jiān)?/p>
7、一起倒入漏斗中。4.用滴管吸取乙醇,將濾紙上的葉綠體色素全部洗入容量瓶中。直至濾紙和殘?jiān)袩o綠色為止。最后用乙醇定容至25ml,搖勻。5.把葉綠體色素提取液倒入光徑1cm的比色杯內(nèi)。以95%乙醇為空白,在波長665nm、649nm下測定吸光度。四、實(shí)驗(yàn)結(jié)果計(jì)算:將測定得到的吸光值代入下面的式子:Ca=13.95A665-6.88A649Cb=24.96A649-7.32A665據(jù)此即可得到葉綠素a和葉綠素b的濃度(Ca、Cb:mg/L),二者之和為總?cè)~綠素的濃度。最后根據(jù)下式可進(jìn)一步求出植物組織中葉綠素的含量:葉綠素的含量(mg/g)=[葉綠素的濃度×提取液
8、體積×稀釋倍數(shù)]/樣品鮮重(或干重)。二、多花木藍(lán)幼