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1、干式激光相機(jī)原理干式打印技術(shù)的發(fā)展干式打印技術(shù)起源于上世紀(jì)60年代發(fā)明的傳真機(jī).在90年代初應(yīng)用于放射醫(yī)療影像（KONICAW公司，3M公司，F(xiàn)UJI公司，Sterling公司）干式相機(jī)發(fā)展簡(jiǎn)史采用干式相機(jī)的原因良好的影像質(zhì)量由于沒有顯影/定影液，影像質(zhì)量不易受外界條件的影響維護(hù)簡(jiǎn)單由于沒有濕式打印酸堿藥液腐蝕及自顯機(jī)等故障靈活安裝無(wú)需配置上、下水管和暗房，使用安裝場(chǎng)所靈活節(jié)約、環(huán)保節(jié)約水資源，無(wú)廢氣廢液的產(chǎn)生。激光曝光、熱顯影系統(tǒng)熱顯影Image激光束受熱曝光潛影感光層保護(hù)層片基影像的形成激光掃描銀蔟物理顯影有機(jī)銀鹽銀離子Ag(RCOOAg)加熱顯影體潛影市場(chǎng)情況目前市
2、場(chǎng)上的干式激光激光相機(jī)絕大部分是采用激光曝光、熱顯影技術(shù)市場(chǎng)上主要產(chǎn)品有FUJI的FM-DPL、DRYPIX7000KODAK的DRYVIEW8100、8200、8700、8900KONICA的DRYPRO793、DRYPRO771、DRYPRO751、DRYPRO751752產(chǎn)品對(duì)比FUJIFILMKODAKKONICA每小時(shí)打印量130張DPL55張81/8200120張180張7000120張8700180張8900最小像素50um78um81/82/870040um40um8900打印灰階DPL12bit12bit14bit700014bitDICOM連接直接/服
3、務(wù)器服務(wù)器服務(wù)器氣味無(wú)刺激無(wú)直接熱成像技術(shù)成像原理將圖象數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)變?yōu)殡娒}沖后輸入到熱打印頭，電信號(hào)在熱打印頭處由電能轉(zhuǎn)變?yōu)闊崮?，從而使膠片溫度升高，形成影象直接熱成像技術(shù)顯影微粒室溫高溫室溫微囊受體市場(chǎng)情況目前市場(chǎng)上采取直接熱成像技術(shù)的有FUJIFILM，AGFAFUJIFILM產(chǎn)品有DYRPIX1000，DRYPIX3000AGFA產(chǎn)品有DRYSTAR3000，DRYSTAR4500（M）和DRYSTAR5500產(chǎn)品對(duì)比FujifilmAgfa每小時(shí)打印量50張(3000)50張(3000)90張（1000）90張（4500）100張（5500）像素84.7um79um(
4、3000)50um(45/5500)最小光密度0.200.25最大光密度3.03.0(3.54500M)產(chǎn)品對(duì)比lFujifilmAgfa真實(shí)尺寸打印是否DICOM直接連接是是激光誘導(dǎo)成像技術(shù)成像原理其膠片上附著碳基介質(zhì)，當(dāng)激光束掃描時(shí)，碳基介質(zhì)被激活，通過(guò)剝離覆蓋層，可以使激活的介質(zhì)從膠片上脫離下來(lái)，從而在膠片上形成影像采用這種成像技術(shù)的廠家主要有寶麗來(lái)公司（Helios系列），杜邦公司也層生產(chǎn)過(guò)。干式成像質(zhì)量隨著干式成像的發(fā)展，一些技術(shù)比如自動(dòng)密度校正，遠(yuǎn)程診斷，自動(dòng)影像質(zhì)量控制技術(shù)等已成為干式相機(jī)的基本配置各家公司還各自發(fā)展了一些自己的技術(shù)來(lái)提高影像質(zhì)量實(shí)驗(yàn)五血液葡
5、萄糖的測(cè)定（福林-吳憲氏法）一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?、掌握采用福林-吳憲氏法測(cè)定血液中葡萄糖的原理。2、熟悉分光光度計(jì)的使用。二、實(shí)驗(yàn)原理磷鉬酸鉬藍(lán)（藍(lán)色）C6H12O6+2Cu(OH)2C5H11O5COOH+Cu2O↓3Cu2O+3H3PO4·2MoO3·12H2O6CuO+3H3PO4·Mo2O3·12H2ONa2CO3＋H2O＝NaOH+NaHCO3NaOH+CuSO4=Cu(OH)2+Na2SO4堿性銅試劑鉬藍(lán)溶液顯藍(lán)色，其藍(lán)色的深淺與血濾液中葡萄糖的濃度成正比，選用顏色深淺較接近于測(cè)定管的標(biāo)準(zhǔn)管一同比色，即可求出測(cè)定管中葡萄糖的含量。血糖管的使用：血糖管下部的管徑較細(xì)，
6、以避免還原生成的氧化亞銅被空氣中的氧再氧化，降低實(shí)際結(jié)果。無(wú)蛋白血濾液的制備多生化分析要避免蛋白質(zhì)干擾，常常先將其中蛋白質(zhì)除去；分析血液中許多成分時(shí)，也常常需要除去蛋白質(zhì)，制成無(wú)蛋白質(zhì)的血濾液。制備無(wú)蛋白血濾液的方法很多，可根據(jù)不同的需要加以選擇?，F(xiàn)將生化常用的無(wú)蛋白血濾液制備方法介紹如下：鎢酸法原理：血液中的蛋白質(zhì)在pH小于其等電點(diǎn)時(shí)，可用鎢酸來(lái)沉淀。鎢酸鈉與硫酸混合產(chǎn)生鎢酸和硫酸鈉，游離的鎢酸被，蛋白質(zhì)吸附，形成不溶性的鎢酸蛋白而沉淀，經(jīng)過(guò)濾或離心，除去沉淀即得無(wú)蛋白的血濾液。試劑：①10%鎢酸鈉溶液；②0.333mol／L硫酸溶液。儀器與器材：錐形瓶、吸管、奧氏吸管
7、、濾紙、漏斗或離心管及離心機(jī)。方法與步驟：①取50ml錐形瓶1只，加入蒸餾水7份；②用奧氏吸管吸取抗凝血l份，擦去管壁外血液，將吸管插人錐形瓶中水的底部，緩慢地放出血液。放完血液后，將吸管提高吸取上清液再吹人，反復(fù)洗管3次。充分混合，使紅細(xì)胞完全溶解；③加入0.333mol／L硫酸溶液1份，隨加隨搖，充分混勻。此時(shí)血液由鮮紅變成棕色，靜置5～10min，使其酸化完全；④加入10％鎢酸鈉溶液1份，邊加邊搖，血液由透明變成凝塊狀。當(dāng)振搖到不再產(chǎn)生泡沫為止；⑤放置數(shù)分鐘后用定量濾紙過(guò)濾或離心除去沉淀，即得完全澄清的無(wú)蛋白血濾液，供測(cè)
