正交設(shè)計(jì)法優(yōu)化川木通rapd

正交設(shè)計(jì)法優(yōu)化川木通rapd

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1、正交設(shè)計(jì)法優(yōu)化川木通RAPD作者:國(guó)錦琳,陳璐,任艷,裴瑾,萬(wàn)德光【摘要】目的確定川木通rapd-pcr反應(yīng)各因素的最佳水平,最終確定rapd-pcr反應(yīng)的最佳反應(yīng)條件。方法采用正交設(shè)計(jì)l16(45)在4個(gè)水平上對(duì)川木通類植物進(jìn)行rapd-pcr進(jìn)行試驗(yàn)。兩次結(jié)果分別用統(tǒng)計(jì)軟件minitab進(jìn)行分析。結(jié)果最終確定rapd-pcr反應(yīng)的最佳反應(yīng)條件為:20μl體系,其中含1×pcrbuffer,2.5mmol/lmgcl2,0.15mmol/ldntps,1.0utaq酶,0.5μmol/l10-mer引物,50ng模板dna,最終確定退火溫度36℃。同時(shí)發(fā)現(xiàn)taq酶對(duì)反應(yīng)體系影響最大。結(jié)

2、論建立了可靠的反應(yīng)體系,為該類藥材的分子鑒定奠定了基礎(chǔ)?!娟P(guān)鍵詞】正交設(shè)計(jì);川木通;rapd-pcr川木通類藥材均來(lái)自于毛茛科鐵線鏈屬植物,該屬植物我國(guó)共分布有108個(gè)種[1],有些鐵線蓮屬藥用植物外形極為相似,有時(shí)非花期植株難以鑒別,經(jīng)過(guò)藥材加工后更加難以辨別,容易在應(yīng)用中造成品種混亂,影響臨床用藥安全與療效。.因此,在具體開(kāi)發(fā)使用本屬藥用植物資源時(shí),應(yīng)重視和加強(qiáng)對(duì)其品種的鑒定,以確保資源的正確合理使用。rapd繼承了pcr技術(shù)效率高,樣品用量少(只需少量dna樣品),靈敏度高,檢測(cè)容易等優(yōu)點(diǎn)[2],目前被廣泛地應(yīng)用于藥用植物的分類鑒定工作。但pcr各因素水平對(duì)反應(yīng)結(jié)果均有影響。目前關(guān)

3、于川木通rapd-pcr的反應(yīng)體系優(yōu)化未見(jiàn)報(bào)道,本實(shí)驗(yàn)采用正交設(shè)計(jì)l16(45)在4個(gè)水平上對(duì)川木通類植物進(jìn)行rapd-pcr進(jìn)行試驗(yàn),建立了較為可靠的反應(yīng)體系。本工作為以后該類植物與藥材的分子鑒定奠定了基礎(chǔ)?! ?材料本實(shí)驗(yàn)所使用的川木通原植物均為作者在四川各地實(shí)地采集,植物葉片采集后采用硅膠直接干燥,另外部分采集后直接編號(hào)用液氮保存,此后保存在-80℃冰箱備用,所采集植物均經(jīng)過(guò)萬(wàn)德光教授鑒定后備用?! aq聚合酶、dntp、t4連接酶、瓊脂糖購(gòu)自takara寶生物工程(大連)有限公司;rapd引物購(gòu)自北京賽百盛公司?! ?方法  2.1植物總dna的小規(guī)模提取與dna濃度的測(cè)定提取

4、方法按干滟等[3]的方法并稍加改進(jìn)。測(cè)定濃度后稀釋至50ng/μl?! ?.2pcr反應(yīng)因素水平的確定與正交表的設(shè)計(jì)[4]為了確定pcr反應(yīng)中的5個(gè)因素(taq酶、mg2+、模板dna、dntp、引物)的最佳水平,采用正交設(shè)計(jì)l16(45)在4個(gè)水平上進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。參加pcr反應(yīng)的因素水平見(jiàn)表1,l16(45)設(shè)計(jì)方案見(jiàn)表2。表1pcr反應(yīng)的因素水平μl水平(略)表2pcr反應(yīng)的因素水平l16(45)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)μl(略)  將表2的16個(gè)處理重復(fù)兩次,在pcr儀上進(jìn)行擴(kuò)增,結(jié)果電泳檢測(cè),記錄。用統(tǒng)計(jì)軟件minitab進(jìn)行分析,得到川木通rapd-pcr反應(yīng)各因素的最佳水平,最后在pcr儀上

5、,用此最佳因素水平的pcr反應(yīng)體系進(jìn)行梯度退火試驗(yàn),篩選得到最佳退火溫度。  2.3rapd擴(kuò)增在正交結(jié)果的基礎(chǔ)上,建立了本實(shí)驗(yàn)所使用的體系[5,6]。rapd擴(kuò)增反應(yīng)所采用的條件和體系如下:20μl體系,其中含1×pcrbuffer,2.5mmol/lmgcl2,0.15mmol/ldntps,1.0utaq酶,0.5μmol/l10-mer引物,50ng模板dna,補(bǔ)ddh2o至終體積20μl。pcr反應(yīng)熱循環(huán)程序如下:95℃預(yù)變性5min;36℃復(fù)性1min;72℃延伸1.5min;94℃變性1min;36℃復(fù)性1min;72℃延伸1.5min,35個(gè)循環(huán)。最后72℃延伸10min

6、,反應(yīng)產(chǎn)物在4℃保存。  2.4電泳分析與結(jié)果統(tǒng)計(jì)dna擴(kuò)增產(chǎn)物在1×tae的緩沖條件下,于1.5%瓊脂糖凝膠分離,溴化乙錠染色。標(biāo)準(zhǔn)分子量為tokara提供的dl2000marker。使用凝膠成像系統(tǒng)(gds8000,美國(guó)uvp)拍照分析。  3結(jié)果  3.1電泳結(jié)果評(píng)分按照表2設(shè)計(jì)的16個(gè)處理進(jìn)行pcr反應(yīng)后,產(chǎn)物進(jìn)行電泳。結(jié)果見(jiàn)圖1?! 「鶕?jù)電泳結(jié)果,按照本實(shí)驗(yàn)?zāi)康模匆院髮⒁M(jìn)行的遺傳多樣性分析的要求將16個(gè)處理從高到低依次打分,條帶數(shù)量越豐富、清晰度越高、背景低的最佳產(chǎn)物記為16分,與此相反,最差的記為1分[7,8]。兩次重復(fù)分別獨(dú)立設(shè)計(jì),從兩次重復(fù)的結(jié)果看,各個(gè)處理組合的反應(yīng)

7、都具有較高的一致性。兩次記分分別為1,13,14,11,10,16,15,12,2,9,8,7,6,5,4,3和1,12,14,13,10,16,11,15,2,8,9,7,5,6,4,3。  3.2各因素對(duì)pcr反應(yīng)影響的差異分析將上述處理結(jié)果用統(tǒng)計(jì)軟件minitab(minitabinc.)進(jìn)行方差分析。結(jié)果見(jiàn)表3。由f值可見(jiàn),taq酶的影響最大,模板的影響最小,各因素對(duì)pcr反應(yīng)的影響由大到小依次為:taq酶、引物、mg2+、

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