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1、【原創(chuàng)】雙酶切連接反應(yīng)之全攻略（原創(chuàng)）雙酶切連接反應(yīng)之全攻略前一陣子一直在做雙酶切質(zhì)粒重組，失敗了很多次，不過(guò)很快改善了實(shí)驗(yàn)方法，用2周重組了14個(gè)質(zhì)?！，F(xiàn)就自己的體會(huì)，結(jié)合戰(zhàn)友的寶貴經(jīng)驗(yàn)，談一下質(zhì)粒重組的一些個(gè)人經(jīng)驗(yàn)。1、回收PCR產(chǎn)物：在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí)候，給引物兩端設(shè)計(jì)好酶切位點(diǎn)，一般說(shuō)來(lái)，限制酶的選擇非常重要，盡量選擇粘端酶切和那些酶切效率高的限制酶，如BamHI,HindIII,提前看好各公司的雙切酶所用公用的BUFFER，以及各酶在公用BUFFER里的效率。選好酶切位點(diǎn)后，在各個(gè)酶的兩邊加上保護(hù)堿基，其原則可參照：http://img.....cn/upload
2、/2006/08/13/31219184.pdf。雙酶切時(shí)間及其體系：需要強(qiáng)調(diào)的是很多人建議酶切過(guò)夜，其實(shí)完全沒(méi)有必要，我一般酶切3個(gè)小時(shí)，其實(shí)1個(gè)小時(shí)已經(jīng)足夠。應(yīng)用大體系，如100微升。純化問(wèn)題：純化PCR產(chǎn)物割膠還是柱式，我推薦柱式，因?yàn)楦钅z手法不準(zhǔn)，很容易割下大塊的膠，影響純化效率?，F(xiàn)在的柱式純化號(hào)稱可以祛除引物，既然如此，酶切掉的幾個(gè)堿基肯定也會(huì)被純化掉了。所以，PCR產(chǎn)物和雙酶切產(chǎn)物的純化均可應(yīng)用柱式純化。我用的是TAKARA的純化柱試劑盒酶量的問(wèn)題：以TAKARA的為例，其對(duì)1單位酶的定義如下：在50μl反應(yīng)液中，30℃溫度下反應(yīng)1小時(shí)，將1μg的λDNA完全分
3、解的酶量定義為1個(gè)活性單位(U)。而該酶濃度約為15單位/微升，在除外酶降解的因素外，該酶可分解15μg的DNA，而一般從1-4ml菌液提出的DNA約為3μg，而PCR純化后的產(chǎn)物（50體系）約為3μg，所以即便全部加進(jìn)去，只要純化的質(zhì)量好，酶切完全切得動(dòng)。2、酶切、回收后的PCR產(chǎn)物與載體的連接摩爾比的計(jì)算，很多人憑經(jīng)驗(yàn)也可以。但對(duì)于初學(xué)者從頭認(rèn)真計(jì)算則非常有必要?；厥盏妮d體片段：回收的PCR產(chǎn)物片段=1：10 ，一般取前者0.03pmol，后者取0.3pmol。pmol為單位的DNA轉(zhuǎn)換為為μg單位的DNA：（Xpmoles×長(zhǎng)度bp×650）/1,000,000（注：
4、長(zhǎng)度bp×650是該雙鏈DNA的分子量）所得數(shù)值即為μg,也可以直接用這個(gè)公式套.1pmol1000bpDNA=0.66μg,如載體是5380bp，則0.03pmol為0.03×5.38×0.66=0.106524μg。測(cè)DNA濃度可以在專用機(jī)子上測(cè)，注意OD值，一般約1.8-2.0.另外，如果嫌麻煩，也可用MARKER進(jìn)行估測(cè)，如MARKER2000，5微升的MARKER每個(gè)條帶約50ng。連接反應(yīng)：TAKARA的連接酶上的說(shuō)明寫(xiě)的過(guò)夜，而其對(duì)連接酶單位的定義為：在20μl的連接反應(yīng)體系中，6μg的λDNA-HindIII的分解物在16℃下反應(yīng)30分鐘時(shí)，有90%以上的D
5、NA片段被連接所需要的酶量定義為1個(gè)活性單位（U）。而它的濃度為350U/μl，所以完全夠用。連接酶容易失活，注意低溫操作，最好在冰上。時(shí)間3個(gè)小時(shí)足已。3、轉(zhuǎn)化：a、全量（10μl）加入至100μlJM109感受態(tài)細(xì)胞中，冰中放置30分鐘。b、42℃加熱45秒鐘后，再在冰中放置1分鐘。c、加入890μlAMP陰性培養(yǎng)基，37℃振蕩培養(yǎng)60分鐘。取100μl鋪板。也可離心后余100μl幾個(gè)非常重要的問(wèn)題1做轉(zhuǎn)化的時(shí)候,進(jìn)行酶連接反應(yīng)時(shí),注意保持低溫狀態(tài),因?yàn)長(zhǎng)IGASE酶很容易降解.為保險(xiǎn)起見(jiàn),一般連接3小時(shí),16度.2對(duì)含有AMP-RESISTENCE的質(zhì)粒鋪板時(shí),注意加
6、AMP時(shí)的溫度,溫度過(guò)高,會(huì)使克隆株無(wú)法篩選出來(lái).我的方法是培基高溫消毒后放在烤箱里，烤箱一般溫度為55-60度，然后做的時(shí)候拿出來(lái)，這樣好掌握溫度。鋪板前后注意用吹風(fēng)機(jī)吹干3對(duì)照的設(shè)立：為驗(yàn)證雙酶切是否成功,可做如下對(duì)照:A酶切反應(yīng)時(shí)加各單酶分別切,兩管,用同一種BUFFER,跑膠,看單切的兩管是否成線性.如兩管均成線性可初步判斷雙酶切成功.做轉(zhuǎn)化時(shí),也要進(jìn)行對(duì)照.設(shè)4個(gè):A.即拿雙酶切的質(zhì)粒產(chǎn)物也進(jìn)行連接反應(yīng),這個(gè)對(duì)照可進(jìn)一步看雙酶切是否成功,如果長(zhǎng)出克隆,說(shuō)明很有可能只進(jìn)行了單酶切,如沒(méi)長(zhǎng)出克隆,則證明雙酶切成功,當(dāng)然要保證感受態(tài),培基,連接酶都'正常'的情況下.B.
7、酶切過(guò)的未進(jìn)行連接反應(yīng)的雙酶切產(chǎn)物,進(jìn)行轉(zhuǎn)化,這一步可以證明是否有殘留的未被任何酶切的原始質(zhì)粒C.設(shè)原始質(zhì)粒為對(duì)照,意為檢測(cè)整個(gè)操作過(guò)程中是否有誤.D.AMP陰性板上用同一批感受態(tài)細(xì)胞鋪板20微升足夠,檢測(cè)感受態(tài)狀況.4.所有的試劑切記低溫保存.一步一個(gè)腳印.不要偷懶,圖省事最后卻更費(fèi)事.注意設(shè)立對(duì)照。經(jīng)PCR鑒定，克隆90%-100%的陽(yáng)性率，所以在后面的挑克隆中，我只挑選4個(gè)就足夠了。然后雙酶切鑒定，測(cè)序。。。。。。希望大家不斷補(bǔ)充。Ding一下，和我的方法差不多。連接前最好將水、插入片段和載體混合好以后置于4
