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《大鼠原代肝細胞分離和培養(yǎng)》由會員上傳分享,免費在線閱讀,更多相關內(nèi)容在行業(yè)資料-天天文庫。
1、大鼠原代肝細胞分離和培養(yǎng)原代肝細胞分離和培養(yǎng)試劑(1)無鈣灌流液?????NaCl???????????????????????????8.3gKCl?????????????????????????????0.5gHEPES??????????????????????????2.4gEDTA???????????????????????????0.015g青霉素??????????????????????????105U鏈霉素??????????????????????????0.1g用適量超純H2O溶解,1mol·
2、L-1NaOH或1mol·L-1HCl調(diào)節(jié)pH至7.4,加超純H2O定容至1L。(2)膠原酶溶液NaCl???????????????????????????8.0gKCl????????????????????????????0.4gCaCl2??????????????????????????0.56gNa2HPO4·12H2O?????????????????0.134gKH2PO4????????????????????????0.06gNaHCO3????????????????????????0.35g葡萄
3、糖?????????????????????????1.00gHEPES?????????????????????????5.96g用適量超純ddH2O溶解,1mol·L-1NaOH或1mol·L-1HCl調(diào)節(jié)pH至7.5-7.6,加超純H2O定容至1L每次酶灌流液用量25mL,臨用前加入IV型膠原酶12.5mg。(3)HBSS緩沖液NaCl??????????????????????????8.0gKCl???????????????????????????0.4gCaCl2?????????????????????
4、????0.14gMgSO4·7H2O???????????????????0.2gNa2HPO4·12H2O????????????????0.134gKH2PO4???????????????????????0.06gNaHCO3???????????????????????0.35g葡萄糖????????????????????????1.00gHEPES????????????????????????5.96g用適量ddH2O溶解,1mol·L-1NaOH或1mol·L-1HCl調(diào)節(jié)pH至7.4,加超純H2O定
5、容至1L。以上溶液均過濾滅菌。肝細胞的消化分散?采用兩步法:先用無鈣灌流液作預灌流,目的在于沖去殘積血,除去或減少肝細胞間的鈣離子,以減小細胞間的粘著力。然后再用含鈣的膠原酶灌流液灌流,以消化細胞間質(zhì)而分散肝細胞,具體步驟如下:①???預灌流:健康SD大鼠(體重150~200g),禁食8h后,水合氯醛(10%)麻醉,四肢伸展腹部向上背部固定于操作臺上,胸腹部酒精消毒。小心打開腹腔,暴露分離肝門靜脈,用留置針門靜脈插管,動脈夾立即夾緊,剪斷下腔靜脈以37℃無鈣灌流液以流速20mL·min-1開放灌流,并迅速剪斷下腔靜脈以
6、備灌流液順暢流出。先做在位灌流數(shù)分鐘,此時肝臟及其血管解剖位置保持正常,可保證灌流順暢。然后,邊灌流邊剪斷肝臟與周圍組織的聯(lián)系,將肝臟移置肝臟托盤內(nèi)繼續(xù)灌流;注意不要損傷肝包膜,并盡量保持肝葉和血管的正常位置,不可扭曲。灌流過程中肝臟漸漸變?yōu)榛尹S色,灌流時間大約10min。預灌流一般需用灌流液約為300mL左右。②酶灌流:預灌流后換用37℃的通O2的膠原酶灌流液繼續(xù)灌流。灌流速度仍維持20mL·min-1。如果灌流通暢,則肝臟顏色均勻。由于肝細胞間質(zhì)被消化,灌流液進入細胞間隙,因而可見到肝臟逐漸腫脹??筛鶕?jù)經(jīng)驗,肉眼觀
7、察肝臟腫脹程度來選擇最佳灌流時間,一般酶灌流約需8~15min。③分散肝細胞:以下操作在超凈工作臺內(nèi)進行。在酶灌流達到最佳效果時取下肝臟,將之移至盛有20mLHBSS緩沖液(含10%胎牛血清)的平皿中。用眼科鑷子小心撕去肝包膜,將肝臟在培養(yǎng)液中輕輕振搖,使消化好的肝細胞散落到緩沖液中。操作中要注意盡量輕柔,避免細胞受機械力傷害。過200目不銹鋼網(wǎng)篩,濾去剩余的雜組織,形成肝細胞懸液。肝實質(zhì)細胞的純化:將肝細胞懸液收集在錐形瓶中,于37℃振蕩培養(yǎng)15min。在此期間,受損傷肝細胞進一步排出其內(nèi)容物而變得更輕,易于在離心時
8、與完整細胞分開;懸液在0~6℃條件下以200r·min-1離心3~5min,棄去上清,用PBS以同上條件清洗、離心三次。末次棄上清后以培養(yǎng)液重懸,即可得到絕大部分為肝實質(zhì)細胞的懸液。細胞產(chǎn)量及成活率的測定用血細胞計數(shù)板按血紅細胞計數(shù)方法求得每mL懸液中的細胞數(shù),再乘以所得肝細胞懸液的總量mL數(shù),即為細胞產(chǎn)量。用0.6%等張臺盼蘭(